Name: Chirurgisches Protokoll für ein großes, wiederverschließbares Schädelfenster, das longitudinale, multimodale elektrophysiologische Aufzeichnungen des Maus-Default-Mode-Netzwerks ermöglicht (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2026-05-29T16:25:00.000+00:00
Duration: 14 min 34 s
Description: Erfahren Sie ein chirurgisches Protokoll zur Erstellung eines großen, wiederverschließbaren Schädelfensters bei Mäusen für langfristige elektrophysiologische Aufzeichnungen des Default-Mode-Netzwerks.

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<table><tbody><tr><td>&Mikro; ECoG-Array &mdash; 512-Kanal benutzerdefiniert (2 & Times; 256 ch)</td><td>NeuroNexus</td><td>E256-200-30-80</td><td>Verpackung: IH256. Zweimal 16&&; 16 Untergitter (jeweils 3,3 mm & mal; 3,5 mm); 200 & mu; m-Tonhöhe; 80 &mu; m Elektrodendurchmesser. Oberflächliche DMN-Aufnahmen.</td></tr><tr><td>3-Achsen-Linkshand-Mikromanipulatorarm</td><td>Weltpräzisionsinstrumente (WPI)</td><td>504926</td><td>10 & mu; m Auflösung; digitale Anzeige; Zur Positionierung der Kopfplatte und Sonde während der Operation verwendet</td></tr><tr><td>3D-gedruckte Schutzkappe</td><td>In-house (Anycubic Photon Mono 4K)</td><td>N/A</td><td>Individuelles Design; gedruckt in Anycubic High Clear UV-Harz; STL-Datei verfügbar bei https://github.com/RazBalin/ProtectiveDMN_Cap</td></tr><tr><td>Aceton (Laborqualität)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>179973</td><td>Entfettung der Schädeloberfläche und Entfernung des Periosts vor dem Klebstoff</td></tr><tr><td>Adson Dura Hook 5 mm (Feiner Dura Haken)</td><td>gSource</td><td>gS 25.2570</td><td>Verwendet zum Abtrennen der Knochenplatten von der Dura entlang des Rands; gefertigt aus feinem Wolframdraht oder ähnlichem</td></tr><tr><td>Anycubic High Clear UV-Harz</td><td>Anycubic</td><td>STMGCL-102B&nbsp;</td><td>Photopolymerharz, das mit dem Anycubic Photon Mono 4K-Drucker für 3D-gedruckte Schutzkappen verwendet wird</td></tr><tr><td>Anycubic Photon Mono 4K 3D-Harzdrucker</td><td>Anycubic</td><td>PHOTON-MONO-4K</td><td>Verwendet zum Drucken von Schutzfensterkappen aus Anycubic High Clear Resin</td></tr><tr><td>Anycubic UV Resin Wash & Cure Machine 2.0</td><td>Anycubic</td><td>285-550</td><td>Nachdruckwäsche und UV-Aushärtung von 3D-gedruckten Kappen</td></tr><tr><td>Beweglicher Arm mit magnetischer Basis (& Times; 2)</td><td>Haas-Werkzeuge</td><td>09-0535</td><td>Früher hielt ich & Mikro; ECoG-Subgitter, die während der Aufzeichnungen auf der kortikalen Oberfläche vorhanden sind</td></tr><tr><td>Künstlicher Liquor (aCSF)</td><td>Interne Vorbereitung</td><td>N/A (In-house)</td><td>aCSF-Rezept: 124 mM NaCl, 3 mM KCl, 26 mM NaHCO3, 2 mM CaCl2, 1 mM MgSO4, 1,25 mM KH2PO4, 10 mM D-Glukose; Sauerstoff mit 95 % O2 / 5 % CO2 unmittelbar nach der Vorbereitung. Katalognummern separat aufgeführt.</td></tr><tr><td>Stumpfe mikrochirurgische Klinge (Kreisskalpell) &nbsp;</td><td>Iogen</td><td>374769</td><td>Verwendet zum Abkratzen der Schädeloberfläche und zum Entfernen der Kappe</td></tr><tr><td>Buprenorphin (Temgetisch)</td><td>Indivior</td><td>BE-112515</td><td>Opioid-Analgetikum; 0,05 mg/kg s.c. präoperativ</td></tr><tr><td>C57BL/6JRj-Mäuse</td><td>Janvier Labs</td><td></td><td>Männlich oder weiblich; Mindestens 10 Wochen alt, >20 g Körpergewicht zum Zeitpunkt der Operation</td></tr><tr><td>Calciumchloriddihydrat (CaCl2&Middot; 2H2O)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C-7902</td><td>2 mM; MW 147,02; 0,29 g/L. Zubereitet als Ca & Times; 100 Aktie. Bestandteil des internen aCSF.</td></tr><tr><td>Carprofen (Rimadyl)</td><td>Zoetis Tiergesundheit</td><td>RXRIM-INJ&nbsp;</td><td>NSAID-Analgetikum; 5 mg/kg s.c. präoperativ</td></tr><tr><td>Kortikosteron</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C2505</td><td>Gelöst im Trinkwasser für 21-tägiges Modell chronischer Stress / Depression</td></tr><tr><td>Wattestäbchen</td><td>&nbsp; Fisherbrand</td><td>&nbsp; 22-363-157&nbsp;</td><td>Dient als Griff für eine 30-G-Dura-Stichvorrichtung und zum Entfetten der Schädeloberfläche mit Aceton</td></tr><tr><td>Cyanoacrylat-Kleber & Mdash; Loctite 401</td><td>Henkel-Klebstoffe</td><td>Loctite 401</td><td>Cyanoacrylat mit dünner Viskosität; Verwendet für das Grundieren der Schädeloberfläche, zur Fixierung der Kopfplatte und zur Kappenfixierung</td></tr><tr><td>Zahnbohrer & Dash; Foredom K.1070</td><td>Vorherrschaft</td><td>K.1070</td><td>Rotationsbohrer mit flexiblem Schaft; Verwendet für das Verdünnen von Kraniotomie und das Bohren von Pilotbohrlöchern</td></tr><tr><td>Dexamethason</td><td>Dopharma</td><td>1DEX004</td><td>Kortikosteroid-Entzündungshemmend; 2 mg/kg s.c. präoperativ</td></tr><tr><td>D-Glukose</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G-7021</td><td>10 mM; MW 180.20; 1,80 g/L. Zubereitet als Glukose & Gang; 100 Aktie. Bestandteil des internen aCSF.</td></tr><tr><td>Bohrer Stahlbohrer rund 1/007W</td><td>Hager & Meisinger</td><td>18089</td><td>Verwendet für die Referenzseite und das Schädelfenster</td></tr><tr><td>Ethanol 80 % (v/v) – A12t Dilutus</td><td>Berner</td><td>13221132</td><td>Präoperatives Einweichen von chirurgischen Instrumenten und der operativen laminaren Haube zur Sterilisation</td></tr><tr><td>Gas-Evakuierungsgerät</td><td>RWD Life Science</td><td>R546W</td><td>Entfernt Anästhetikagase aus dem Operationsbereich</td></tr><tr><td>Vergoldete Referenzfassung</td><td>DigiKey</td><td>310-13-102-41-001000</td><td>Implantiert über dem linken Kleinhirn; dient als ECoG-Boden/Referenz</td></tr><tr><td>GRANT Ultraschallreiniger &mdash; Modell 17002A</td><td>GRANT-Instrumente</td><td>17002A</td><td>EAN: 4064343191654. Heißwasser-Ultraschallbad; verwendet mit TICKOPUR TR 3 zur Instrumentenreinigung</td></tr><tr><td>Heizkisse & Dash; Supertech TMP-5B</td><td>Supertech</td><td>TMP-5B</td><td>Hält die Körpertemperatur bei 37 °C; C während der Anästhesie</td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Piramal Gesundheitsversorgung</td><td>66794-017-25</td><td>Inhalationsanästhetikum; Induktion 4 %, Pflege 1,5 % & Ndash; 2.5%</td></tr><tr><td>Kimtech Science, Präzisionstücher (faserfreies Gewebe)</td><td>KIMBERLY CLARK</td><td>7552</td><td>Verwendet mit spitzer Spitze, um restliche ACSF zu trocknen und die PDMS-Membranhaftung an der Dura zu unterstützen</td></tr><tr><td>Kwik-Cast steriles Elastomer-Dichtmittel</td><td>Weltpräzisionsinstrumente (WPI)</td><td>KWIK-CAST-s</td><td>Modell: KWIK-CAST-S. Biokompatibles Silikon; verwendet zur Herstellung von abnehmbarer Abdichtung um die PDMS-Membran.&nbsp;</td></tr><tr><td>LED-UV-Aushärtungsstift 405 nm</td><td>CureUV</td><td>514424-405</td><td>Wird verwendet, um UV-aktivierten Zahnklement (Total C-Ram) während der Einnistung auszuhärten</td></tr><tr><td>Lidocain-Epinephrin-Lösung</td><td>Orion Pharma</td><td>05 10 31</td><td>Lokalanästhesie; S.C.-Injektion unter der Kopfhaut</td></tr><tr><td>Magnesiumsulfat-Heptahydrat (MgSO4&middot; 7H2O)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M-7774</td><td>1 mM; MW 246,48; 0,25 g/L. Zubereitet als Mg & mal; 100 Aktie. Bestandteil des internen aCSF.</td></tr><tr><td>Metallkopfplatte & Bindestrich; Neurotar Modell 13</td><td>Neurotar</td><td>Modell 13</td><td>Titan-Kopfplatte; runde Öffnung mit 11 mm Durchmesser; am Schädel mit Cyanoacrylat und Zahnklement befestigt</td></tr><tr><td>NeuroNexus Headstage-Adapter )</td><td>NeuroNexus</td><td>Custom IH256 64&times; 4 Molex&nbsp;</td><td>Individuelle Adapterplatine; Sandwiches jeweils & Mikro; ECoG-Subgitter zwischen zwei Intan RHD 128-Kanal-Kopfstufen</td></tr><tr><td>Neuropixels 1.0-Sonde mit Metallkappe (& Times; 2)</td><td>IMEC</td><td>PRB_1_4_0480_1_C</td><td>960 Aufnahmestellen; 10 mm Schaft. Eine Sonde zielt auf die hippocampale-thalamus-visuelle Säule, eine auf die mPFC-Säule ab, eine auf die mPFC-Säule abzielt</td></tr><tr><td>NI PXIe-1083 Fahrgestell</td><td>Nationale Instrumente</td><td>PXIe-1083</td><td>9-Steckplätze PXI Express-Chassis mit Neuropixels-Modul und NI-DAQ-Karten</td></tr><tr><td>NI PXIe-3839 Multifunktions-I/O-Modul</td><td>Nationale Instrumente</td><td>PXIe-3839</td><td>Eingebaut im NI PXIe-1083-Gehäuse; verwendet für Synchronisation und Hilfs-I/O</td></tr><tr><td>NI PXIe-6363 Multifunktions-DAQ</td><td>Nationale Instrumente</td><td>PXIe-6363</td><td>Eingebaut im NI PXIe-1083-Gehäuse; analoge und digitale I/O für Synchronisation</td></tr><tr><td>Nova-Mikrozinator -&nbsp; Infrarot-Sterilisator</td><td>Argos Tech</td><td>S3022</td><td>Verwendet zur schnellen Sterilisation aller Instrumente, die freiliegendes Gehirngewebe berühren könnten</td></tr><tr><td>Olympus SZ51 Stereo-Fernglasmikroskop</td><td>Olympus</td><td>SZ51</td><td>Chirurgische Visualisierung; Verwendet während der gesamten Kraniotomie- und Einnistungsphasen</td></tr><tr><td>Open Ephys Acquisition Board (One Box, 1. Generation)</td><td>Open Ephys</td><td>OEPS-9029</td><td>Empfängt & Mikro; ECoG-Datenströme über SPI; Open-Source-Hardware. Siehe open-ephys.org</td></tr><tr><td>Open Ephys GUI</td><td>Open Ephys</td><td>N/A (Open Source)</td><td>Kostenlose, quelloffene Software zur Erfassung der Elektrophysiologie. Verfügbar unter: open-ephys.org</td></tr><tr><td>Kaliumchlorid (KCl)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P-5405</td><td>3 mM; MW 74,55; 0,22 g/L. Komponente des hausinternen aCSF.</td></tr><tr><td>Kaliumdihydrogenphosphat (KH2PO4)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P-5655</td><td>1,25 mM; MW 136.09; 0,17 g/L. Komponente des hausinternen aCSF (Klebs & Times; 10 Serien).</td></tr><tr><td>Povidon-Jod-Lösung (BETADIN)</td><td>Takeda</td><td>45 70 28</td><td>Topisches Desinfektionsmittel für die Vorbereitung des chirurgischen Feldes</td></tr><tr><td>PXIe-Erfassungsmodul</td><td>Neuropixel</td><td>PXIE_1000</td><td>PXI-Format-Modul für Neuropixels 1.0 Datenerfassung; installiert im NI PXIe-1083-Gehäuse</td></tr><tr><td>Referenzsteckverbinder</td><td>DigiKey</td><td>342-10-102-00-591000</td><td>Entsprechender Verbindungsstecker für Referenzbuchse oben; Teile Teilenummer mit DigiKey bestätigen</td></tr><tr><td>RHD 128-Kanal-Headstage (& Times; 4)</td><td>Intan Technologies</td><td>RHD 128</td><td>Zwei Headstages pro &micro; ECoG-Subgrid; Modell bestätigen (z. B. RHD2132 oder RHD2164)</td></tr><tr><td>RHD SPI-Schnittstellenkabel, 0,9 m</td><td>Intan Technologien / Open Ephys</td><td>C3203</td><td>Standard-SPI-Kabel, das die RHD-Headstages mit der Open Ephys-Akquisitionsbox verbindet</td></tr><tr><td>Heckantriebsluftpumpe</td><td>RWD Life Science</td><td>R510-29</td><td>Sorgt für Luftzirkulation durch den Anästhesiekreis</td></tr><tr><td>RWD Tieranästhesie-Verdampfer</td><td>RWD Life Science</td><td>R5835</td><td>Präzisions-Isofluran-Verdampfer zur Einleitung und Aufrechterhaltung der Anästhesie</td></tr><tr><td>Skalpellklinge #11</td><td>Swann Morton</td><td>SM0103</td><td>Verwendet zum Gravieren von Kreuzmustern auf der Schädeloberfläche, um den Haftgriff zu verbessern</td></tr><tr><td>Haartrimmer für kleine Tiere – GT416</td><td>Aesculap Schermaschinen GmbH</td><td>D-98528H</td><td>Wurde verwendet, um die Tierkopfhaut vor der Operation zu trimmen</td></tr><tr><td>Natriumbicarbonat (NaHCO3)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S-5761</td><td>26 mM; MW 84,01; 2,18 g/L. Komponente des hausinternen aCSF.</td></tr><tr><td>Natriumchlorid (NaCl)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S-5886</td><td>124 mM; MW 58.44; 7,25 g/L. Bestandteil des internen aCSF.</td></tr><tr><td>SOL-M (Sterile Spritze 30 G)</td><td>Sol-Millennium Europa</td><td>113005</td><td>Bent 90 Grad; an der Spitze und am Wattestäbchen befestigt, um eine Dura-Stichvorrichtung zu bilden</td></tr><tr><td>Standard-Manipulatorarm, 3-Achs-LINKS (Stoelting)</td><td>Stoelting Co.</td><td>51604</td><td>Verwendet für das Einführen von Neuropixel-Sonden während der Aufnahmesitzungen</td></tr><tr><td>Standard-Manipulatorarm, 3-Achs-RECHTS (Stoelting)</td><td>Stoelting Co.</td><td>51606</td><td>Verwendet für das Einführen von Neuropixel-Sonden während der Aufnahmesitzungen</td></tr><tr><td>Stereotaktischer Rahmen & Dash; Heckantrieb F67001</td><td>RWD Life Science</td><td>F67001</td><td>Standard-stereotaxischer Rahmen; Verwendet für Kopfstabilisierung und koordinatenbezogene Implantation</td></tr><tr><td>Chirurgischer Marker-Hautstift mit Lineal (Violet Ink)</td><td>Fannin</td><td>SM0372</td><td>Biokompatibler, auf Enzian-Violett basierender chirurgischer Hautmarker, der verwendet wird, um die geplante Kraniotomie zu markieren und den Fußabdruck auf den Knochen zu implantieren. Resistent gegen Cyanoacrylat-Priming (Loctite 401) und bleibt durch Schädelentfettung und Kopfplattenfixierung sichtbar, was eine zuverlässige Übertragung stereotaktischer Koordinaten auf die Knochenoberfläche ermöglicht.</td></tr><tr><td>SYLGARD 184 Silikon-Elastomer-Kit (PDMS)</td><td>Dow (Deutschland)</td><td>1673921</td><td>Polydimethylsiloxan; In dünne (< 1 mm) Membranen; Auf der Duraloberfläche platziert, um das Gehirn zu schützen</td></tr><tr><td>Tergazym-enzymatisches Waschmittel</td><td>Alconox</td><td>1304-1</td><td>Protease-basierter Reiniger, der mit 1 % (W/V) in lauwarmem RO-Wasser für die Elektrodenreinigung nach der Sitzung verwendet wird (45 Minuten einweichen, dann dreifach in gereinigtem Wasser spülen).</td></tr><tr><td>Total C-Ram Automix UV Dental Cement (Weiß)</td><td>Itena</td><td>R301950</td><td>Modell: TTCRAM-BLC. UV-aushärtendes Zahnharz; Verwendet zur Verstärkung der Kopfplatte und zur Befestigung der Steckdose</td></tr><tr><td>Ultraschallreinigungslösung (TICKOPUR TR 3)</td><td>&nbsp;Dr. H. Stamm GmbH</td><td>TR-3-913&nbsp;</td><td>Konzentrat auf Zitronensäurebasis; Verwendung im Ultraschallbad zur Reinigung von Instrumenten nach der Operation</td></tr><tr><td>Viscotears Augengel 2 mg/g</td><td>Alcon</td><td>503849</td><td>Kohlenhydratbasierte gleitende Augensalbe; während der Anästhesie auf die Hornhäute aufgetragen, um das Austrocknen zu verhindern</td></tr><tr><td>Zeiss Cold Light Source KL1500 LCD</td><td>Carl Zeiss</td><td>KL1500 LCD</td><td>Glasfaser-Kaltbeleuchtung für das chirurgische Feld; verhindert thermische Schäden</td></tr></tbody></table>

chirurgisches protokoll für ein großes, wiederverschließbares schädelfenster, das longitudinale, multimodale elektrophysiologische aufzeichnungen des maus-default-mode-netzwerks ermöglicht

Surgical Protocol for a Large, Resealable Cranial Window Enabling Longitudinal, Multi-Modal Electrophysiology Recordings of Mouse Default Mode Network

Chirurgisches Protokoll für ein großes, wiederverschließbares Schädelfenster, das longitudinale, multimodale elektrophysiologische Aufzeichnungen des Maus-Default-Mode-Netzwerks ermöglicht

The default mode network (DMN) is a central, large-scale brain network implicated in a range of cognitive functions and neuropsychiatric disorders, such ...

surgical-protocol-for-large-resealable-cranial-window-enabling

Research

Forschung

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowissenschaften

Wir beschreiben Methoden zur großflächigen Erfassung von mehreren Einzelgeräten und lokalen Bereich Potential in Nagetieren verhalten mit Silizium-Sonden. Antrieb Fertigung, Sonde Befestigung an der Antriebs-und Sonde Implantation Prozesse sind in ausreichender Details für eine einfache Replikation dargestellt.

Großflächige Aufnahme von Neuronen durch Movable Silicon Probes in Behaving Nagetiere

Es wird ein Verfahren zur Manipulation der Aktivität der zerebralen kortikalen Pyramidenzellen optogenetically während das Elektroenzephalogramm, Elektromyogramm, und zerebrale Laktatkonzentration überwacht werden beschrieben. Experimentelle Aufnahmen werden auf Kabel-tethered Mäusen durchgeführt, während sie spontane Schlaf / Wach-Zyklen. Optogenetische Ausrüstung wird in unserem Labor zusammengebaut; Kontrollgerät ist kommerziell erhältlich.

Gleichzeitige Elektroenzephalographie, Real-time Messung der Laktat-Konzentration und optogenetische Manipulation der neuronalen Aktivität in der Nagetier Cerebral Cortex

Diese Methode erstellt eine greifbare, vertraute Umgebung für die Maus zu navigieren und zu erkunden während der mikroskopischen Abbildung oder Einzelzellelektrophysiologischen Ableitungen, die feste Fixierung des Kopfes des Tieres verlangen.

Flach platt Klima angehoben Plattform: Eine neue Methode zur Kombination von Verhalten mit Mikroskopie oder Elektrophysiologie auf Awake frei bewegen Nagetiere

Dieses Protokoll stellt eine Methode zur Schaffung einer großen einseitigen Kraniotomie über die zeitlichen und parietalen Regionen der Maus Hirnrinde. Dies ist besonders nützlich für die Echtzeit-Bildgebung über einen expansiven Bereich einer kortikalen Hemisphäre.

Ein Großer Lateral Craniotomy Verfahren für Mesoskalige Breitfeld Optical Imaging von Hirnaktivität

Hier wird ein Protokoll zur Implantation eines chronischen Schädelfensters für die Längsbildgebung von Gehirnzellen in wachen, kopfgefesselten Mäusen vorgestellt.

Implantation eines kranialen Fensters für wiederholte In-vivo-Bildgebung bei wachen Mäusen

Hier stellen wir das Herstellungsverfahren eines Optrode-Systems mit optischen Fasern für die Lichtabgabe und einem Elektrodenarray für die neuronale Aufzeichnung vor. In-vivo-Experimente mit transgenen Mäusen, die Kanalrhodopsin-2 exprimieren, zeigen die Machbarkeit des Systems für die gleichzeitige optogenetische Stimulation und elektrophysiologische Aufzeichnung.

Optroden-Array zur simultanen optogenetischen Modulation und elektrischen neuronalen Aufzeichnung

Ein kostengünstiges elektroenzephalographisches Aufzeichnungssystem in Kombination mit einer millimetergroßen Spule wird vorgeschlagen, um die transkranielle Magnetstimulation des Mäusegehirns in vivo zu steuern. Unter Verwendung herkömmlicher Schraubenelektroden mit einem speziell angefertigten, flexiblen Multielektroden-Array-Substrat kann als Reaktion auf die transkranielle Magnetstimulation eine Multi-Site-Aufzeichnung aus dem Mäusegehirn durchgeführt werden.

Kostengünstiges elektroenzephalographisches Aufzeichnungssystem in Kombination mit einer millimetergroßen Spule zur transkraniellen Stimulation des Mäusegehirns in vivo

Wir haben einen vereinfachten und kostengünstigen Ansatz für die Elektrodenherstellung entwickelt und Aufzeichnungen von Signalen über mehrere Regionen hinweg in frei beweglichen Mäusen durchgeführt. Die Verwendung der Optogenetik in Verbindung mit der Multiregionen-Elektrophysiologie und der Kalziumsignalaufzeichnung ermöglichte die Aufdeckung neuronaler Aktivitäten über Regionen hinweg im Anfallskindling-Modell.

Eine integrierte Methode zur Herstellung flexibler und komfortabler elektrophysiologischer Optroden für die In-vivo-Aufzeichnung in mehreren Regionen

Dieses Protokoll beschreibt eine Methode, um in vivo Einzelneuronen-Aufzeichnungen mit hoher Dichte aus dem Hirnstamm von kopffixierten Mäusen zu erhalten. Dieser Ansatz wird eingesetzt, um das Aktionspotentialfeuer von Neuronen im ventrolateralen periaquäduktalen Grau - einer Hirnstammregion, die während des REM-Schlafs (Rapid Eye Movement) inaktiv ist - vor und während der Vollnarkose zu messen.

Akute Einzel-Multi-Elektroden-Ableitungen aus dem Hirnstamm von Mäusen mit fixiertem Kopf

Diese Studie stellt eine skalierbare, zuverlässige und reproduzierbare Methode für wiederholte chronische kortikale Aufzeichnungen in einem Schweinemodell vor. Die Methode findet Anwendung in verschiedenen Bereichen der Neurowissenschaften, unter anderem in der Schmerzforschung und in der neurologischen Diagnostik.

Chronische Schädelfenstertechnik für wiederholte kortikale Aufzeichnungen während der Anästhesie bei Schweinen

Hier stellen wir zwei Protokolle für die Aufzeichnung von Mikro-Elektrokortikographie (μEcoG) mit hoher Dichte bei Ratten und Mäusen vor, einschließlich chirurgischer, Implantations- und Aufzeichnungsmethoden. μECoG-Aufzeichnungen werden entweder in Kombination mit laminarer Polytrodenaufzeichnung im auditorischen Kortex der Ratte oder mit optogenetischer Manipulation der neuronalen Aktivität im somatosensorischen Kortex der Maus durchgeführt.

Multiskalige Untersuchungen der kortikalen Prozessierung durch Integration laminarer Polytroden und Optogenetik mit Mikroelektrokortikographie bei Nagetieren

Erfahren Sie ein chirurgisches Protokoll zur Erstellung eines großen, wiederverschließbaren Schädelfensters bei Mäusen für langfristige elektrophysiologische Aufzeichnungen des Default-Mode-Netzwerks.

Chirurgisches Protokoll für ein großes, wiederverschließbares Schädelfenster, das longitudinale, multimodale elektrophysiologische Aufzeichnungen des Maus-Default-Mode-Netzwerks ermöglicht (Video) | JoVE Journal

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