Name: Isolation efficace des cellules souches et adipocytes dérivés de l’adipeux à partir du tissu adipeux porcine (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2026-05-26T13:40:00.000+00:00
Duration: 8 min 2 s
Description: Découvrez une méthode rapide d'isolation de cellules souches adipose-dérivées (ADSC) à partir de tissu adipeux porcin utilisant une digestion enzymatique combinée à une dissociation mécanique par ondes sinusoïdales.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

<ol><li>Qin, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+update+on+adipose-derived+stem+cells+for+regenerative+medicine%3A+where+challenge+meets+opportunity%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Sci%22%5BJournal%5D)">An update on adipose-derived stem cells for regenerative medicine: where challenge meets opportunity.</a> Adv Sci. 10 (20), 1-27 (2023).</li>
<li>Wang, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+review+of+adipose-derived+mesenchymal+stem+cells%E2%80%99+impacts+and+challenges%3A+metabolic+regulation%2C+tumor+modulation%2C+immunomodulation%2C+regenerative+medicine+and+genetic+engineering+therapies%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Endocrinol%22%5BJournal%5D)">A review of adipose-derived mesenchymal stem cells’ impacts and challenges: metabolic regulation, tumor modulation, immunomodulation, regenerative medicine and genetic engineering therapies.</a> Front Endocrinol. 16, 1606847(2025).</li>
<li>Suchanecka, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adipose+derived+stem+cells+%E2%80%93+sources%2C+differentiation+capacity+and+a+new+target+for+reconstructive+and+regenerative+medicine%5BTitle%5D)+AND+%22Biomed+Pharmacother%22%5BJournal%5D)">Adipose derived stem cells – sources, differentiation capacity and a new target for reconstructive and regenerative medicine.</a> Biomed Pharmacother. 186, 118036(2025).</li>
<li>Su, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bridging+the+gap%3A+clinical+translation+of+adipose-derived+stem+cells+-+a+scoping+review+of+clinical+trials%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Res+Ther%22%5BJournal%5D)">Bridging the gap: clinical translation of adipose-derived stem cells - a scoping review of clinical trials.</a> Stem Cell Res Ther. 16 (1), 288(2025).</li>
<li>Alexandersson, I., Harms, M. J., Boucher, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+culture+of+human+mature+adipocytes+using+membrane+mature+adipocyte+aggregate+cultures+%28MAAC%29%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Isolation and culture of human mature adipocytes using membrane mature adipocyte aggregate cultures (MAAC).</a> J Vis Exp. (156), e60485(2020).</li>
<li>Attané, C., Estève, D., Moutahir, M., Reina, N., Muller, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+protocol+for+human+bone+marrow+adipocyte+isolation+and+purification%5BTitle%5D)+AND+%22STAR+Protoc%22%5BJournal%5D)">A protocol for human bone marrow adipocyte isolation and purification.</a> STAR Protoc. 2 (3), 100629(2021).</li>
<li>Emont, M. P., Rosen, E. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exploring+the+heterogeneity+of+white+adipose+tissue+in+mouse+and+man%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Genet+Dev%22%5BJournal%5D)">Exploring the heterogeneity of white adipose tissue in mouse and man.</a> Curr Opin Genet Dev. 80, 102045(2023).</li>
<li>Uguten, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparing+mechanical+and+enzymatic+isolation+procedures+to+isolate+adipose-derived+stromal+vascular+fraction%3A+a+systematic+review%5BTitle%5D)+AND+%22Wound+Repair+Regen%22%5BJournal%5D)">Comparing mechanical and enzymatic isolation procedures to isolate adipose-derived stromal vascular fraction: a systematic review.</a> Wound Repair Regen. 32 (6), 1008-1021 (2024).</li>
<li>Villanueva-Carmona, T., Cedó, L., Núñez-Roa, C., Maymó-Masip, E., Vendrell, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protocol+for+the+in+vitro+isolation+and+culture+of+mature+adipocytes+and+white+adipose+tissue+explants+from+humans+and+mice%5BTitle%5D)+AND+%22STAR+Protoc%22%5BJournal%5D)">Protocol for the in vitro isolation and culture of mature adipocytes and white adipose tissue explants from humans and mice.</a> STAR Protoc. 4 (4), 102693(2023).</li>
<li>Cohen, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adipose+tissue+explant+culture+using+PDMS+flow+chambers%3A+an+alternative+to+static+explant+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Adipocyte%22%5BJournal%5D)">Adipose tissue explant culture using PDMS flow chambers: an alternative to static explant culture.</a> Adipocyte. 14 (1), (2025).</li>
<li>Liu, Y., Zhao, H., Yu, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+laboratory-based+strategy+for+single+adipocyte+and+adipose-derived+stem+cells+extraction+for+transplantation%3A+an+experimental+research%5BTitle%5D)+AND+%22Aesthet+Plast+Surg%22%5BJournal%5D)">A novel laboratory-based strategy for single adipocyte and adipose-derived stem cells extraction for transplantation: an experimental research.</a> Aesthet Plast Surg. 49, 367-379 (2025).</li>
<li>Tangkanjanavelukul, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cartilage+regeneration+potential+in+early+osteoarthritis+of+the+knee%3A+a+prospective%2C+randomized%2C+open%2C+and+blinded+endpoint+study+comparing+adipose-derived+mesenchymal+stem+cell+%28ADSC%29+therapy+versus+hyaluronic+acid%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Mol+Sci%22%5BJournal%5D)">Cartilage regeneration potential in early osteoarthritis of the knee: a prospective, randomized, open, and blinded endpoint study comparing adipose-derived mesenchymal stem cell (ADSC) therapy versus hyaluronic acid.</a> Int J Mol Sci. 26 (17), 8476(2025).</li>
<li>Qayyum, A. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+allogeneic+adipose+tissue-derived+mesenchymal+stromal+cell+treatment+in+chronic+ischaemic+heart+failure+with+reduced+ejection+fraction+%E2%80%93+the+SCIENCE+trial%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Heart+Fail%22%5BJournal%5D)">Effect of allogeneic adipose tissue-derived mesenchymal stromal cell treatment in chronic ischaemic heart failure with reduced ejection fraction – the SCIENCE trial.</a> Eur J Heart Fail. 25 (4), 576-587 (2023).</li>
<li>Arab, F. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Safety+and+feasibility+of+intravenous+fresh+adipose-derived+mesenchymal+stem+cells+in+secondary+progressive+multiple+sclerosis%3A+phase+I%2FIIa+clinical+results%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Res+Ther%22%5BJournal%5D)">Safety and feasibility of intravenous fresh adipose-derived mesenchymal stem cells in secondary progressive multiple sclerosis: phase I/IIa clinical results.</a> Stem Cell Res Ther. 17, 120(2026).</li>
<li>Sheykhhasan, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Therapeutic+potential+and+mechanistic+insights+into+adipose-derived+stem+cells+and+mesenchymal+stem+cell-derived+exosomes+in+patients+with+Crohn%E2%80%99s+disease-associated+fistulas%3A+challenges+and+future+perspectives%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Res+Ther%22%5BJournal%5D)">Therapeutic potential and mechanistic insights into adipose-derived stem cells and mesenchymal stem cell-derived exosomes in patients with Crohn’s disease-associated fistulas: challenges and future perspectives.</a> Stem Cell Res Ther. 16, 664(2025).</li>
<li>Dufau, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+and+ex+vivo+models+of+adipocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">In vitro and ex vivo models of adipocytes.</a> Am J Physiol Cell Physiol. 320 (5), C822-C841 (2021).</li>
<li>Ghazal, S. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adipose+tissue-derived+stem+cells%3A+a+comparative+review+on+isolation%2C+culture%2C+and+differentiation+methods%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Tissue+Bank%22%5BJournal%5D)">Adipose tissue-derived stem cells: a comparative review on isolation, culture, and differentiation methods.</a> Cell Tissue Bank. , 1-16 (2021).</li>
<li>Zhu, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+methods%2C+proliferation%2C+and+adipogenic+differentiation+of+adipose-derived+stem+cells+from+different+fat+depots+in+bovines%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cell+Biochem%22%5BJournal%5D)">Isolation methods, proliferation, and adipogenic differentiation of adipose-derived stem cells from different fat depots in bovines.</a> Mol Cell Biochem. , (2023).</li>
<li>Benitez, G. J., Shinoda, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+adipose+tissue+nuclei+for+single-cell+genomic+applications%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Isolation of adipose tissue nuclei for single-cell genomic applications.</a> J Vis Exp. (160), e61230(2020).</li>
<li>Basatvat, S., Bach, F. C., Barcellona, M. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Harmonization+and+standardization+of+nucleus+pulposus+cell+extraction+and+culture+methods%5BTitle%5D)+AND+%22JOR+Spine%22%5BJournal%5D)">Harmonization and standardization of nucleus pulposus cell extraction and culture methods.</a> JOR Spine. 6 (1), e1238(2023).</li>
<li>Escudero, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scalable+generation+of+pre-vascularized+and+functional+human+beige+adipose+organoids%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Sci%22%5BJournal%5D)">Scalable generation of pre-vascularized and functional human beige adipose organoids.</a> Adv Sci. 2301499, 1-20 (2023).</li>
<li>Mandl, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+organoid+model+derived+from+human+adipose+stem%2Fprogenitor+cells+to+study+adipose+tissue+physiology%5BTitle%5D)+AND+%22Adipocyte%22%5BJournal%5D)">An organoid model derived from human adipose stem/progenitor cells to study adipose tissue physiology.</a> Adipocyte. 11 (1), 164-174 (2022).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Kit de dissociation tissulaire de type A</td><td>Docsense</td><td>TM001</td><td>Contient un agent de dissociation tissulaire de type A (solution de type A) et un tampon de dissociation tissulaire de type A (tampon A).</td></tr><tr><td>Kit de médium de différenciation adipogénique</td><td>OriCell</td><td>GUXMD-90031</td><td>Utilisé pour la différenciation adipogénique, incluant le milieu d’Eagle modifié de Dulbecco (non modifié) et le milieu d’entretien à haute glycémie</td></tr><tr><td>Alizarin Red S</td><td>OriCell</td><td>A5533ALIR-10001</td><td>Coloration par minéralisation pour la différenciation ostéogénique (pH 5,2)</td></tr><tr><td>Acide ascorbique</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A4544</td><td>Acide L-ascorbique, culture cellulaire testée, pour induction ostéogénique</td></tr><tr><td>Bama minipigs</td><td>Chengdu Dossy Animaux Expérimentaux Co., Ltd</td><td></td><td>Des animaux mâles d’un an, de qualité SPF, maintenus selon des procédures standardisées de vaccination, de vermifugation et de nettoyage.https ://www.cd-dossy.cn/animalpl_detail/12606067609851863 04.html</td></tr><tr><td>Compteur automatisé de cellules Bio-Rad TC20</td><td>Laboratoires Bio-Rad</td><td>1450011</td><td>Compteur automatique de cellules pour l’évaluation de la viabilité et du rendement</td></tr><tr><td>BODIPY</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>D3922</td><td>Coloration lipidique neutre</td></tr><tr><td>BSA (5 %)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A9418</td><td>Albumine sérique bovine, poudre lyophilisée, pour le blocage</td></tr><tr><td>Calcitriol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C9756</td><td>1&alpha,25-Dihydroxyvitamine D3, pour l’induction ostéogénique</td></tr><tr><td>Tamis à cellules (70 & mu ; m)</td><td>Corning</td><td>352350</td><td>Falcon 70 & mu ; Filtre à cellules m, stérile, pour la préparation d’échantillons FACS</td></tr><tr><td>Filtre cellulaire (200 & mu ; m)</td><td>pluriSelect</td><td>43-50200-03</td><td>pluriStais, maillage PET, peut accueillir des tubes de 50 mL, stériles & nbsp ;</td></tr><tr><td>tube centrifugeuse (50 mL)</td><td>Corning</td><td>352098</td><td>Falcon 50 mL tube conique à haute clarté, stérile, polypropylène</td></tr><tr><td>Diapositive de comptage (pour Bio-Rad TC20)</td><td>Laboratoires Bio-Rad</td><td>1450011</td><td>Culasse de comptage à double chambre pour compteur de cellules automatisé TC20 & nbsp ;</td></tr><tr><td>Plat de culture (100 mm)</td><td>Corning</td><td>430167</td><td>Plaque en polystyrène stérile, pour la formation d’organoïdes en goutte suspendue</td></tr><tr><td>Dexaméthasone</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D4902</td><td>&ge ; 98 %, pour l’induction adipogénique et ostéogénique</td></tr><tr><td>Solution saline équilibrée D-Hanks ou PBS</td><td>Gibco</td><td>10010015</td><td>Pré-refroidi à 4 °C ; C, pH 7,4.</td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Gibco</td><td>11965084</td><td>Celle-ci est utilisée pour la culture fraîchement isolée de SVF</td></tr><tr><td>DNase I</td><td>Beyotime</td><td>D7073</td><td>Optionnel, recommandé si des agglutinements sont observés.</td></tr><tr><td>Éthanol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>459836</td><td>75 % pour la désinfection des surfaces.</td></tr><tr><td>Sérum fœtal bovin (FBS)</td><td>Gibco</td><td>A4736201</td><td>Système Tet approuvé, origine américaine, stérile & nbsp ;</td></tr><tr><td>Cytomètre en flux</td><td>BD Biosciences</td><td>BD FACSCanto II</td><td>3 lasers (405 nm, 488 nm, 633 nm), 8 canaux de fluorescence, pour l’analyse des marqueurs de surface (CD73, CD90, CD11b, CD45), atteint 70 <img alt="Équation 1 » src="/files/ftp_upload/70464/70464eq1.jpg » style="margin : auto ; "/> exigence de buse à 20 psi</td></tr><tr><td>Microscope à fluorescence</td><td>Olympe</td><td></td><td>Modèle inversé ou vertical capable de filtres FITC et DAPI.</td></tr><tr><td>Anticorps secondaires fluorescents</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>A-11001 (anti-souris), A-11008 (anti-lapin)</td><td>Alexa Fluor conjugué, pour l’immunofluorescence</td></tr><tr><td>Anticorps conjugués au fluorochrome (CD73, CD90, CD11b, CD45)</td><td>BD Biosciences</td><td>561254 (CD73), 561970 (CD90), 557321 (CD11b), 555485 (CD45)</td><td>Pour l’analyse cytométrique en flux du phénotype ADSC</td></tr><tr><td>Hoechst</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>H3570</td><td>Coloration nucléaire pour l’évaluation des cellules vivantes/mortes.</td></tr><tr><td>IBMX</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I5879</td><td>&ge ; 99 % (HPLC), pour un milieu d’induction adipogénique</td></tr><tr><td>Solution saline stérile glacée</td><td>Baxter</td><td>2F7124</td><td>Injection de chlorure de sodium à 0,9 %, USP, pour rincer les tissus</td></tr><tr><td>Insuline</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I9278</td><td>Recombinant, exprimé dans la levure, pour l’induction adipogénique</td></tr><tr><td>Iodophore</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>25104</td><td>Solution désinfectante à 2 %.</td></tr><tr><td>Matrigel</td><td>Corning</td><td>354230</td><td>Facteur de croissance réduit, sans phénol rouge, pour l’implantation de sphéroïdes &nbsp ;</td></tr><tr><td>Bain métallique</td><td>Servicebio</td><td>SMB-H</td><td>Utilisé pour l’incubation à 37 °C.</td></tr><tr><td>Oil Red O</td><td>OriCell</td><td>OILR-10001</td><td>Coloration lipidique pour la différenciation des adipocytes</td></tr><tr><td>Microscope optique</td><td>Olympe</td><td></td><td>Microscope de champ clair standard avec 10x et n-trait ; 40x objectifs.</td></tr><tr><td>Kit de médium de différenciation ostéogénique</td><td>OriCell</td><td>GUXMD-90021</td><td>Utilisé pour la différenciation ostéogénique, notamment le médium d’Eagle modifié (non modifié) de Dulbecco à haute glycémie, ainsi que le médium d’entretien</td></tr><tr><td>Pipette P1000 avec embouts à large calibre</td><td>Beckman Coulter</td><td>B01113</td><td>Embouts à large calibre Biomek P1000 Span-8, stériles</td></tr><tr><td>Paraformoldéhyde (4 %)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>J61899</td><td>Solution aqueuse, pour fixer les organoïdes &nbsp ;</td></tr><tr><td>Pasteur pipette</td><td>Corning</td><td>7095S-5C</td><td>Stérile, jetable.</td></tr><tr><td>Pénicilline-Streptomycine</td><td>Gibco</td><td>15070063</td><td>10 000 U/mL de pénicilline, 10 000 et mu ; g/mL streptomycine, stérile &nbsp ;</td></tr><tr><td>Pentobarbital sodium</td><td>Hikma Pharmaceuticals USA Inc.</td><td>24201-010-20</td><td>Injectable, pour l’euthanasie (100 mg/kg de poids corporel, intraveineux). ANDA 203619 & nbsp ;</td></tr><tr><td>Anticorps primaires (CD73, CD90, CD11b, CD45)</td><td>BD Biosciences</td><td>561254 (CD73), 561970 (CD90), 557321 (CD11b), 555485 (CD45)</td><td>Pour l’immunocoloration organoïde</td></tr><tr><td>Tampon de lyse des globules rouges (RBC)</td><td>Solarbio</td><td>R1010</td><td>Si nécessaire pour les applications en aval.</td></tr><tr><td>Centrifugeuse réfrigérée</td><td>Eppendorf</td><td>5702R</td><td>Utilisé pour les étapes de centrifugation à 4 °C.</td></tr><tr><td>Rosiglitazone</td><td>Cayman Chemical</td><td>71740</td><td>&ge ; 98 %, PPAR & gamma ; Agoniste pour l’induction adipogénique</td></tr><tr><td>Conteneur à objets tranchants</td><td>Becton Dickinson</td><td>305270</td><td>Contenant résistant aux perforations pour lames et ciseaux d’occasion</td></tr><tr><td>Système de préparation à la suspension à cellule simple SoniConvert</td><td>Docsense</td><td>SC-L1W</td><td>Utilisé pour la dissociation mécanique des tissus.</td></tr><tr><td>Tampon de coloration (tampon de coloration par cytométrie en écoulement)</td><td>eBioscience (Thermo Fisher Scientific)</td><td>00-4222-57</td><td>200 mL, prêts à l’emploi, contiennent FBS et 0,09 % d’azide de sodium comme conservateur, pour la dilution des anticorps et des cellules, la coloration de surface et les étapes de lavage en cytométrie en flux &nbsp ;</td></tr><tr><td>Tube Eppendorf stérile de 1,5 mL</td><td>Eppendorf</td><td>30121.517</td><td>Tube de microcentrifuge Safe-Lock, stérile, pour le hachage des tissus</td></tr><tr><td>Plat de culture stérile</td><td>Corning</td><td>430167</td><td>Plat de culture stérile de 100 mm x 20 mm, pour la collecte de tissus</td></tr><tr><td>Pinces stériles</td><td>Sklar</td><td>96-1719</td><td>Pinces stériles pour le pouce, dentelées, pour la manipulation des tissus & nbsp ;</td></tr><tr><td>Gaze stérile</td><td>Corporations Dukal</td><td>7060033</td><td>Compresses en gaze stériles, pour désinfection et essuyage</td></tr><tr><td>Ciseaux ophtalmiques stériles</td><td>Sklar</td><td>10023-580</td><td>Ciseaux à ressort de style Vannas, pour hacher le tissu en 1-2 mm & sup3 ; Pièces</td></tr><tr><td>Rasoir stérile</td><td>3M</td><td>9681</td><td>Rasoir de préparation chirurgicale, pour l’épilation de la zone opératoire</td></tr><tr><td>Scalpel stérile</td><td>Integra Miltex</td><td>4-415</td><td>Scalpel jetable stérile, pour réaliser des incisions</td></tr><tr><td>Ciseaux chirurgicaux stériles</td><td>Sklar</td><td>10022-580</td><td>Ciseaux à iris stériles Merit, pour disséquer les vaisseaux sanguins et le tissu conjonctif &nbsp ;</td></tr><tr><td>Flacon de culture cellulaire T25</td><td>Corning</td><td>430639</td><td>Fiole de culture cellulaire Falcon T25, capuchon ventilé, stérile</td></tr><tr><td>Triton X-100 (0,1 %)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8787</td><td>Qualité de laboratoire, pour la perméabilisation &nbsp ;</td></tr><tr><td>Bleu de Trypan</td><td>Gibco, Thermo Fisher Scientific</td><td>15250061</td><td>Solution à 0,4 % pour le comptage de la viabilité cellulaire.</td></tr><tr><td>Trypsine-EDTA (0,25 %)</td><td>Gibco</td><td>25200056</td><td>0,25 % de trypsine, 1 mM d’EDTA, pour détacher les ADSC</td></tr><tr><td>&bêta ;-Glycérophosphate</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G9422</td><td>Sel disodique pentahydraté, pour l’induction ostéogénique</td></tr></tbody></table>

isolation efficace des cellules souches et adipocytes dérivés de l’adipeux à partir du tissu adipeux porcine

Efficient Isolation of Adipose-derived Stem Cells and Adipocytes from Porcine Adipose Tissue

Isolation efficace des cellules souches et adipocytes dérivés de l’adipeux à partir du tissu adipeux porcine

Adipose-derived stem cells (ADSCs) have emerged as ideal seed cells in regenerative medicine due to their abundant sources, minimally invasive harvesting, ...

efficient-isolation-adipose-derived-stem-cells-adipocytes-from

Research

JoVE Journal

Biology

Cette vidéo présente une technique d’isolement et de culture de cellules souches dérivées du tissu adipeux de l’arc périaortique murin marquées par fluorescence à partir de tissus adipeux murins de l’arc périaortique. Après l’isolement, les NCADCs sont détectés, triés à l’aide d’un tri cellulaire activé par fluorescence, puis cultivés sur une plaque, favorisant ainsi la prolifération cellulaire.

Isolement de cellules souches dérivées du tissu adipeux périortique murin

En 2001, des chercheurs de l'UCLA ont décrit l'isolement d'une population de cellules souches adultes, les cellules appelé ou CSA souches du tissu adipeux, du tissu adipeux. Cet article décrit l'isolement des CSA de lipoaspirates utilisant un protocole de digestion enzymatique manuel à l'aide de la collagénase.

Isolation Manuel des cellules souches du tissu adipeux de Lipoaspirates humaines

Ce protocole décrit l’isolement de cellules souches dérivées du tissu adipeux de porc (pADSC) dans des tissus adipeux sous-cutanés avec examen de la multipotence. Les pADSC multipotents sont utilisés pour délimiter les processus de différenciation des adipocytes et étudier la transdifférenciation en plusieurs lignées cellulaires de mésenchyme mésodermique ou d’autres lignées d’ectoderme et d’endoderme pour des études régénératives.

Isolement et différenciation des cellules souches adipeuses de porcines sous-cutanée des tissus adipeux

Ce protocole décrit l’approche technique permettant d’isoler des sous-populations de cellules stromales adipogènes et fibro-inflammatoires à partir de dépôts de tissu adipeux blanc (WAT) intra-abdominal murin par tri cellulaire activé par fluorescence ou séparation immunomagnétique des billes.

Isolement de sous-populations de cellules stromales adipogènes et fibro-inflammatoires à partir de dépôts adipeux intra-abdominaux murins

Nous présentons une méthode simple pour isoler les cellules progénitrices adipeuses hautement viables des tampons graisseux épididymaux de souris utilisant le tri cellulaire activé par fluorescence.

Préparation des cellules progénitrices adipeuses à partir de tissus adipeux épididymaux de souris

Nous présentons une méthode d’injection cellulaire via la technologie de jet d’eau sans aiguille couplée à une séquelle d’investigations post-accouchement en termes de viabilité cellulaire, de prolifération et de mesures d’élasticité.

Injection de cellules stroma dérivées du tissu adipeux porcin via la technologie waterjet

Les cellules souches mésenchymateuses dérivées du tissu adipeux (CSAd) peuvent être une source potentielle de CSM qui se différencient en cellules productrices d’insuline (IPC). Dans ce protocole, nous fournissons des étapes détaillées pour l’isolement et la caractérisation des Ad-MSC épididymiques de rat, suivies d’un protocole simple et court pour la génération d’IPC à partir des mêmes Ad-MSC de rat.

Isolement de cellules souches mésenchymateuses du tissu adipeux de rat pour la différenciation en cellules productrices d’insuline

Ce protocole décrit une méthodologie pour isoler et identifier les cellules souches mésenchymateuses dérivées du tissu adipeux (CSM) de rats Sprague Dawley.

Isolement et identification de cellules souches mésenchymateuses dérivées du tissu adipeux de rats Sprague Dawley

Ce protocole décrit l’isolement semi-automatisé de la fraction vasculaire stromale (SVF) du tissu adipeux murin pour obtenir des préadipocytes et obtenir une différenciation adipocytaire in vitro. L’utilisation d’un dissociateur tissulaire pour la digestion de la collagénase réduit la variation expérimentale et augmente la reproductibilité.

Isolement semi-automatisé de la fraction vasculaire stromale à partir de tissu adipeux blanc murin à l’aide d’un dissociateur tissulaire

Nous avons identifié le placenta comme un organe majeur lors du développement hématopoïétique. Nous avons constaté que les cellules souches hématopoïétiques (CSH) sont à la fois générées et développées dans le placenta dans des niches uniques microenvironnementales. Ici, nous décrivons des techniques expérimentales nécessaires à l'isolement et la visualisation des CSH dans le placenta de souris.

Isolement et analyse de cellules souches hématopoïétiques à partir du placenta

Découvrez une méthode rapide d'isolation de cellules souches adipose-dérivées (ADSC) à partir de tissu adipeux porcin utilisant une digestion enzymatique combinée à une dissociation mécanique par ondes sinusoïdales.

Isolation efficace des cellules souches et adipocytes dérivés de l’adipeux à partir du tissu adipeux porcine

Explorer plus de vidéos