Name: 기능적 3D 스페로이드 세포 배양의 반자동 표현형 분석 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-08-18T13:10:00.000+00:00
Duration: 6 min 48 s
Description: 배우세요 3D 스페로이드 세포 배양의 반자동 표현형 분석 방법을 LC-MS 단백질체학 기술을 활용하여 HepG2/C3A와 THLE-3 세포의 생물학적 기능을 특성화합니다. 이 프로토콜은 생물의학 연구에 활용됩니다.

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Sidoli 연구소는 백혈병 연구 재단(Hollis Brownstein New Investigator Research Grant), AFAR(Sagol Network GerOmics 상), Deerfield(Xseed 상), Relay Therapeutics, Merck 및 NIH Office of the Director(1S10OD030286-01)에 감사의 뜻을 전합니다.

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<li>Kapalczynska, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((2D+and+3D+cell+cultures+-+a+comparison+of+different+types+of+cancer+cell+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Medical+Science%3A+AMS%22%5BJournal%5D)">2D and 3D cell cultures - a comparison of different types of cancer cell cultures.</a> Archives of Medical Science: AMS. 14 (4), 910-919 (2018).</li>
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</ol>

Helle Sedighi Frandsen은 ClinoStar 시스템 생산업체인 CelVivo ApS에서 연구 과학자로 근무하고 있습니다. 캐롤라인 미켈슨(Karoline Mikkelsen)은 CelVivo ApS에서 산업 박사 과정을 밟고 있으며 덴마크 오덴세의 SDU에서 박사 과정을 밟고 있습니다. 다른 모든 저자는 경쟁하는 재정적 이익이 없습니다.

3차원(3D) 세포 구조 이면의 생물학을 이해하는 것은 그 기능에 대한 보다 포괄적인 지식을 위해 매우 중요합니다. 복잡한 생물학을 연구하고 독성 스크리닝을 수행하기 위해 3D 모델을 사용하는 것에 대한 관심이 높아지고 있습니다. 3D로 세포를 배양할 때는 모델 시스템의 표현형 평가를 포함하여 많은 요소를 고려해야 합니다. 표현형은 형태학, 행동, 생리학적 및 생화학적 특성과 같은 특정 유기체의 관찰 가능한 특성의 그룹으로 정의된다20.
이 프로토콜에서는 몇 가지 스페로이드에서 단백질체학 실험을 수행하고 일반적인 간 표현형을 모니터링하는 데 사용할 수 있는 방법을 보여줍니다. 질량 분석법은 3D 세포 특성 분석에 광범위하게 적용되는 방법이 되어 다양한 생물학적 질문 12,16,21,22을 조사할 수 있습니다. 포괄적인 단백질체 분석을 위해서는 최소 20μg의 단백질 출발 물질을 사용하는 것이 좋으며, 이 중 1μg을 질량분석기에 주입하는 것이 좋습니다. 더 적은 수의 샘플을 추가하면 감도가 손실될 수 있으며, 더 많은 샘플을 추가하면 크로마토그래피의 품질이 점차 악화되어 결국 컬럼이 막힐 수 있다는 점을 언급하는 것이 중요합니다. 이 연구에서 우리는 HepG2/C3A 및 THLE-3 스페로이드가 특정 간 경로이며 혈당 수치를 유지하고 에너지 생산에 중요한 해당과정과 TCA 회로의 중요한 단백질로 풍부하다는 것을 보여주었습니다23,24. 실제로, 질량 분석 분석은 단백질 수준의 정보를 제공할 뿐만 아니라 이전에 그룹16에서 보여준 바와 같이 단백질 번역 후 변형을 조사할 수 있습니다.
3D 표현형 연구에서 고려해야 할 또 다른 측면은 스페로이드의 수와 크기입니다. 실험의 재현성을 높이는 것 외에도 용기 내 3D 구조의 수가 스페로이드의 크기와 대사 활동 수준에 영향을 미칠 수 있으므로 배양을 여러 바이오리액터로 분할할 시기를 결정하기 위해서는 스페로이드의 수를 계산하고 크기를 결정하는 것이 필수적입니다. 그러나 스페로이드의 수와 크기는 세포주, 시작 세포 수, 분할 과정 및 수집 시간에 따라 달라진다는 점을 강조하는 것이 중요합니다. 스페로이드당 세포 수, 단백질 함량 및 연령 함수로서의 크기와 같은 HepG2/C3A 스페로이드 배양에 대한 세부 정보는 Fey, Korzeniowska 및 Wrzesinski25에 의해 제공되었습니다. 여기에 설명된 반자동 방법을 사용하여 정확하고 성공적인 분석을 위해 가장 중요한 단계는 스페로이드의 사진을 잘 보는 것입니다. 간단히 하기 위해 휴대폰이나 태블릿으로 사진을 찍을 수 있지만 해상도는 가능한 한 높게 유지해야 합니다. 이미지를 빠르게 획득할 수 있기 때문에 대규모 스크리닝 실험을 통해 특정 표현형 특징을 시각화하거나 약물 치료에 대한 반응을 조사할 수 있습니다. 그러므로, 세포 기반 분석의 증가로 인해, 지난 10년 동안 이미지 분석을 위한 다수의 오픈 소스 소프트웨어가 개발되었다26. 이 프로토콜에서는 소프트웨어 FIJI18 을 사용하여 스페로이드의 크기를 계산하고 측정하는 반자동 시스템을 설명합니다. 이미지 컬렉션에 적용할 수 있는 일련의 알고리즘 작업을 정의하는 스크립트(간단한 프로그래밍 명령)를 제공하여 분석을 쉽고 빠르게 수행할 수 있도록 했습니다. 그러나 스페로이드의 특성에 따라 수동 측정을 사용해야 합니다. 예를 들어, 스페로이드가 너무 반투명하면 FIJI 스크립트가 정확하지 않습니다. 그건 그렇고, 이 방법이 작동하는 가장 중요한 기준 중 하나는 스페로이드의 소형화입니다. 이 특성은 스페로이드와 배경 사이의 색상 대비를 더욱 향상시키는 데 기여하며, 이는 방법이 정확하기 위해 필요합니다.
요약하면, 재현성이 높은 스페로이드를 성장시키기 위한 방법론을 제시하는 것 외에도 이미지 캡처 및 단백질체학을 통한 표현형 특성 분석과 결합된 반자동 시스템도 설명되었습니다. 3D 세포 분석을 위한 이 도구 상자는 완전 자동화된 이미지 분석 소프트웨어와 차세대 질량 분석기를 통해 더욱 강력해질 것으로 기대합니다.

체외 세포 배양은 생물학의 기초 지식을 확립하는 데 필요하고 매우 귀중한 것으로 입증되었습니다. 특히 생물학과 암에 대한 과학적 이해의 대부분은 단층에서 자라는 세포인 2D 배양 시스템에서 비롯되었습니다. 2D 배양이 지배적인 세포 배양 시스템이었지만 잠재적으로 더 이상의 생물학적 진보를 저해할 수 있는 많은 단점이 있습니다. 예를 들어, 2D 배양은 세포 신호 전달 및 증식에 중요한 세포 간 상호 작용이 부족합니다1. 현재까지 3D 배양 시스템은 분화, 약물 반응, 종양 침습 및 생물학 2,3,4,5를 더 잘 모델링하는 것으로 나타났습니다. 악성 암의 3D 모델링은 고령화 인구와 암 사망률의 증가로 인해 특히 중요합니다. 간세포암(Hepatocellular carcinoma, HCC)은 전 세계적으로 암 관련 사망률의 주요 원인 중 하나이며, 예후가 좋지 않은 경우가 많다6. 간세포암은 치료율이 낮고, 약물 반응이 좋지 않으며, 재발률이 높은 것으로 알려져있다 6,7,8. 정상 간 및 간세포암에 대한 여러 3D 모델이 생체 내 정상 및 악성 간 조직 9,10의 생리학을 모방하여 개발되었습니다.
현재 3D 시스템에는 액체 오버레이, 바이오리액터, 하이드로겔, 스캐폴드 및 3D 프린팅 구조물이 포함됩니다. 생물반응기에서 생성된 스페로이드는 영양소 노출, 가스 교환 및 세포 증식/정지의 종양 분포를 모방하기 때문에 특히 고유한 이점을 제공합니다11. 바이오리액터는 사용 편의성, 큰 확장성, 영양소 확산 및 접근성으로 인해 암 모델에 특히 적합하다11. 또한 바이오리액터는 높은 처리량의 실험, 더 큰 재현성 및 인적 오류 감소를 허용할 수 있습니다. 이 연구에 사용된 바이오리액터는 일반적인 바이오리액터에 적용되는 파괴적 전단력을 최소화하여 더 나은 재현성을 허용하는 감소된 중력 시스템을 시뮬레이션하기 때문에 독특합니다12. 전방위 중력과 전단력의 감소는 세포가 보다 생리적인 방식으로 발달할 수 있도록 합니다. 증거로, 이 방법론에 따라 성장한 HepG2/C3A 세포는 생체 내 ATP, 아데닐레이트 키나아제, 요소 및 콜레스테롤13,14을 생성하는 구형 소기관을 발달시킵니다. 또한 이 3D 시스템의 약물 치료는 2D 배양에 비해 더 발전되고 자동화되어 있습니다. 2D 배양에서 약물 치료는 트립신화하고 세포 건강을 유지해야 하기 때문에 짧은 시간 경과를 거쳐야 하는 경우가 많습니다. 그러나 우리의 경우 세포의 구조와 생리를 방해할 필요 없이 스페로이드의 장기 약물 치료를 수행할 수 있습니다. 따라서 생체 내 생물학적 현상을 더 잘 모델링하고 과학적 발전을 이루기 위해 2D에서 3D 배양으로의 전환이 필요합니다.
이 논문은 재현성이 높은 스페로이드를 성장시키는 방법론(그림 1 및 그림 2)을 제시하고 3D 구조를 표현형적으로 특성화하는 반자동 시스템(그림 3)을 보여줍니다. 이미지 수준에서는 스페로이드의 면적을 계산하고 측정하는 방법에 대한 정보를 제공합니다(그림 3). 질량 분석 방법을 사용하여 단백질체학을 사용하여 특정 생물학적 기능을 평가하는 방법을 보여줍니다(그림 4). 이 데이터를 수집하고 분석함으로써 3D 세포 배양 시스템 이면의 생물학에 대한 이해를 높일 수 있기를 바랍니다.

<table><tbody><tr><td>1.5 mL 마이크로 원심분리기 튜브</td><td>Bio-Rad</td><td>2239480</td><td></td></tr><tr><td>10 mL 주사기</td><td>Fisher Scientific</td><td>1481754</td><td>Luer lock tip, 12 mL</td></tr><tr><td>1000 &micro로 눈금이 매겨짐; L 와이드 보어 피펫 팁</td><td>Fisher Scientific</td><td>14222703</td><td></td></tr><tr><td>200 &micro; L 와이드 보어 피펫 팁</td><td>Fisher Scientific</td><td>14222730</td><td></td></tr><tr><td>96-웰 Orochem 필터 플레이트</td><td>Orochem&nbsp;</td><td>OF1100</td><td></td></tr><tr><td>96웰 스커트 플레이트</td><td>Axygen</td><td>PCR-96-FS-C</td><td></td></tr><tr><td>96웰 진공 매니폴드</td><td>Millipore</td><td>MAVM0960R</td><td></td></tr><tr><td>중탄산암모</td>늄 <td>시그마</td><td>A6141-25G</td><td></td></tr><tr><td>기관지 상피 세포 성장 배지(BEGM)</td><td>Lonza</td><td>CC-3170</td><td></td></tr><tr><td>세포 배양 등급 물</td><td>Corning</td><td>25-055-CV</td><td></td></tr><tr><td>ClinoReactor</td><td>CelVivo</td><td>3D 세포 배양을 위한 N</td><td>/A</td> 바이오리액터</tr><tr><td>ClinoStar 인큐베이터</td><td>CelVivo</td><td>N/A</td><td>3D 세포 배양을 위한 CO2 인큐베이터</td></tr><tr><td>DTT</td><td>Sigma</td><td>D0632-5G</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM)</td><td>Fisher Scientific</td><td>MT17205CV</td><td></td></tr><tr><td>엘플라시아 마이크로웰을 포함하는 24웰 라운드 바닥 초저 부착 플레이트</td><td>Corning</td><td>4441</td><td></td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum</td><td>Fisher Scientific</td><td>MT35010CV</td><td></td></tr><tr><td>Formic acid</td><td>Thermo</td><td>28905</td><td></td></tr><tr><td>Hank's Balanced Salt Solution (HBSS)</td><td>Fisher Scientific</td><td>MT21022CV</td><td></td></tr><tr><td>hEGF</td><td>Corning</td><td>354052</td><td></td></tr><tr><td>HERAcell vios 160i</td><td>Thermo</td><td>51033557</td><td>2D 세포 배양용 CO2 인큐베이터</td></tr><tr><td>Fisher Scientific</td><td>A955-4</td><td></td><td></td></tr><tr><td>HPLC 등급 메탄올</td><td>Fisher Scientific</td><td>A452-1</td><td></td></tr><tr><td>HPLC 등급 수성</td><td>Fisher Scientific</td><td>W5-4</td><td></td></tr><tr><td>요오도아세트아미드</td><td>시그마</td><td>I1149-5G</td><td></td></tr><tr><td>L-글루타민</td><td>Fisher Scientific</td><td>MT25015CI</td><td></td></tr><tr><td>비필수 아미노산</td><td>Fisher Scientific</td><td>MT25025CI</td><td></td></tr><tr><td>Oasis HLB Resin 30 &micro; m</td><td>Waters</td><td>186007549</td><td></td></tr><tr><td>Orbitrap Fusion Lumos Tribrid 질량 분석기</td><td>Thermo</td><td>IQLAAEGAAPfadbmbhq</td><td>고해상도 질량 분석기</td></tr><tr><td>PAULA 현미경</td><td>Leica</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Penicillin-Streptomycin</td><td>Fisher Scientific</td><td>MT3002CI</td><td></td></tr><tr><td>PerkinElmer Victor X2 multilabel microplate reader</td><td>PerkinElmer</td><td></td><td></td></tr><tr><td>pH 종이</td><td>Hydrion</td><td>93</td><td></td></tr><tr><td>Phosphoetanolamine</td><td>Sigma</td><td>P0503</td><td></td></tr><tr><td>Phosphoric acid</td><td>Fisher Scientific</td><td>A260-500</td><td></td></tr><tr><td>피펫 건</td><td>Eppendorf</td><td>Z666467 (Milipore Sigma)</td><td></td></tr><tr><td>냉장 원심분리기</td><td>Thermo</td><td>75-217-420</td><td></td></tr><tr><td>Reprosil-Pur 수지</td><td>MSWIL</td><td>R13. AQ.003</td><td>120 &Aring; 기공 크기, C18-AQ 위상, 3 & M 비드 크기</td></tr><tr><td>SDS</td><td>Bio-Rad</td><td>1610301</td><td></td></tr><tr><td>염기서열분석 등급 변형 트립신</td><td>Promega</td><td>V511A</td><td></td></tr><tr><td>SpeedVac 진공 농축기(96웰 플레이트)</td><td>Thermo</td><td>15308325</td><td>Savant SPD1010</td></tr><tr><td>멸균 후드</td><td>Thermo</td><td>1375</td><td></td></tr><tr><td>멸균 혈청학 피펫</td><td>Fisher Scientific</td><td>1367549</td><td></td></tr><tr><td>S-trap</td><td>Protifi</td><td>C02-micro-80</td><td></td></tr><tr><td>주사기 바늘(18G)</td><td>Fisher Scientific</td><td>14817100</td><td>길이 3인치, 직경 0.05인치</td></tr><tr><td>트리플루오로아세트산(TFA)</td><td>Thermo</td><td>28904</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA</td><td>Gibco</td><td>25300-054</td><td></td></tr><tr><td>Vortex</td><td>Sigma</td><td>Z258415</td><td></td></tr><tr><td>수조</td><td>Fisher Scientific</td><td></td><td></td>FSGPD10</tr></tbody></table>

기능적 3d 스페로이드 세포 배양의 반자동 표현형 분석

Semi-Automated Phenotypic Analysis of Functional 3D Spheroid Cell Cultures

3D 세포 배양의 성장, 처리 및 모니터링을 위해 독립형 clinostat 인큐베이터를 사용할 때의 특성과 이점을 설명하는 프로토콜을 제시합니다. 클리노스타트는 세포가 낮은 전단력과 활발한 영양소 확산으로 재현성이 높은 스페로이드로 조립할 수 있는 환경을 모방합니다. 암 및 비암 간세포(HepG2/C3A 및 THLE-3 세포주) 모두 간세포에 필적하는 기능을 달성하기 전에 3주간의 성장이 필요하다는 것을 입증했습니다. 이 프로토콜은 치료 시 스페로이드를 계산하고 측정하기 위해 스냅샷을 찍을 수 있기 때문에 세포 성장을 모니터링하는 카메라와 함께 3D 세포용 인큐베이터를 활용하는 편리함을 강조합니다. THLE-3 및 HepG2/C3A 세포주의 비교를 설명하여 비암성 세포주와 불멸화된 암세포가 어떻게 성장할 수 있는지 보여줍니다. 우리는 세포 신호 전달을 교란하지 않고, 즉 트립신화가 필요하지 않은 몇 가지 스페로이드에서 단백질체학 실험을 수행할 수 있는 방법을 시연하고 설명합니다. 우리는 단백질체학 분석을 사용하여 호흡 사슬 대사의 전형적인 간 표현형과 금속 해독에 관여하는 단백질 생성을 모니터링하고 스페로이드 면적을 계산하고 측정하는 반자동 시스템을 설명할 수 있음을 보여줍니다. 전체적으로 이 프로토콜은 이미지 캡처를 통한 표현형 특성 분석과 3D 세포 배양 모델을 실험하기 위한 단백질체학 파이프라인으로 구성된 도구 상자를 제공합니다.

이 프로토콜에서는 3D 스페로이드 배양을 위해 특별히 설계된 시스템인 혁신적인 스트레스 없는 3D 세포 인큐베이터의 특성을 설명합니다(그림 2). THLE-3 및 HepG2/C3A 세포주의 3D 배양을 위해 프로토콜을 최적화했습니다. 여기에 설명된 프로토콜은 사용이 간편하며 바이오리액터당 &gt; 100개의 스페로이드를 재현성 있고 비용 효율적으로 배양할 수 있습니다. 생물반응기에 들어가면 스페로이드는 2D 배양에서 유지되는 세포와 유사하게 처리됩니다. 최적의 성장 조건은 일주일에 2-3회 배지를 교환하고(그림 2B) 스페로이드의 성장과 크기에 따라 회전 속도를 조정함으로써 얻을 수 있습니다(그림 2C). 회전하는 바이오리액터에서 3D 스페로이드를 배양하는 이 시스템(그림 2E,F)은 스페로이드를 동일하고 매우 낮은 전단력에 노출시켜 3D 구조를 위한 최적의 성장 환경을 제공합니다.
우리는 이전에 스페로이드가 염색질 변형16의 분석에 어떻게 사용될 수 있는지 보여주었습니다. 여기에서는 간 스페로이드를 얻는 방법과 전체 단백질체 분석을 위해 단백질체학 실험을 수행하는 방법을 자세히 보여줍니다(그림 1). 간단히 말해서, 프로토콜은 배양이 80% 밀도에 도달할 때까지 THLE-3 또는 HepG2/C3A 편평 세포를 사용하여 시작되었습니다. 세포를 스페로이드로 배양하기 위해 약 2,000개의 세포를 마이크로웰이 포함된 초저 부착판에 도금하여 자가 응집할 수 있도록 한 다음 형성된 스페로이드를 바이오리액터로 옮겼습니다(그림 1A). 스페로이드는 배양 후 3주 후에 기능적으로 활성화되지만, 앞서17번 설명한 바와 같이 이 프로토콜에 대해 배양 36일 후 수집된 스페로이드의 결과를 보여줍니다. 채취 후, 스페로이드를 회전시키고, 분석을 위해 펠릿과 상층액을 모두 저장하였다. 세포 생존율은 앞서 설명한 바와 같이, 손상된 세포에 의해 방출되는 아데닐레이트 키나아제의 정량화를 위해 상층액으로부터 평가하였다17. 세포 펠릿에서 세포 단백질을 추출하고, 전체 단백질체를 고분해능 질량분석법으로 분석했습니다(그림 1B).
이 프로토콜은 또한 공개 이미지 처리 프로그램인 FIJI(Fiji Is Just ImageJ)18를 사용하여 스페로이드 계수를 위한 반자동 방법(그림 3A)을 보여줍니다. 분석을 위해 스페로이드의 좋은 품질의 사진을 찍어야 하며 섹션 5에서 언급한 대로 일부 매개변수를 고려해야 합니다. 그런 다음 분석을 위해 그림을 준비한 후 매크로 스크립트(보충 파일 1)를 사용하여 스페로이드를 계산합니다. 매크로는 먼저 스페로이드 그림이 있는 폴더 안에 FIJI Spheroids counting이라는 폴더를 만들어 작동합니다. 이 폴더에는 분석의 모든 정보가 저장됩니다. 여기에는 각 스페로이드의 ID 번호와 함께 계산된 스페로이드의 사진이 포함됩니다. 여기에는 스페로이드 카운팅이라는 Excel 파일도 포함되어 있습니다. 이 파일에는 계산된 각 회전 타원체의 픽셀 영역과 ID 번호가 포함되어 있습니다. 분석된 사진 하나에 해당하는 데이터가 파일의 각 탭에 표시됩니다. 탭은 분석된 그림의 이름에 따라 레이블이 지정됩니다. 스페로이드 크기는 혈관 내 구조물의 수와 약물 처리를 포함한 여러 요인에 의해 손상될 수 있으므로 표면적을 모니터링하는 것도 중요합니다(planimetry). 여기에 제시된 매크로 스크립트(보충 파일 2)는 그림의 스페로이드에 해당하는 검은색 영역을 측정하여 작동합니다(그림 3B). 출력은 각 회전 타원체의 측정된 면적, 둘레 및 직경을 포함하는 planimetry.xlsx 파일에 수집됩니다. 직경을 계산하는 데 사용되는 Feret이라는 측정도 있습니다. Feret은 가능한 가장 긴 직경이고 minFeret은 가장 짧은 직경입니다. 직경은 이 둘의 평균입니다. 출력 폴더 안에는 planimetry.xlsx 파일 외에도 측정된 스페로이드의 그림도 있습니다.
단백질체 분석을 진행하기 전에 배양 시간 동안 스페로이드의 생존력을 평가했습니다. AK의 수준은 17일째까지 증가하여 세포 사멸의 약 7%에 도달한 다음 사멸은 5% 미만 수준으로 감소하며(그림 4A), 이는 이전에 발표된 연구17에 따릅니다. 이 프로토콜은 또한 세포 표현형을 모니터링하기 위한 전체 단백질체 분석을 보여줍니다. 먼저, THLE-3 및 HepG2/C3A 편평 세포와 스페로이드의 단백질체를 비교했습니다. 첫 번째 주성분(PC1)을 분석하면 편평 세포 배양에서 스페로이드 샘플이 엄격하게 분리되어 있음이 분명하며 세포 유형(THLE-3 및 HepG2/C3A)의 상관관계는 관련이 없는 것으로 보입니다(그림 4B). THLE-3 및 HepG2/C3A 스페로이드는 함께 뭉치지 않지만 간 기능과 일치하는 유사한 프로필을 공유합니다. 우리는 이 프로토콜에서 간에서 수행되는 금속 해독에 중요한 역할을 하는 메탈로티오네인의 예를 보여줍니다. 단백질체학 분석에서 편평 세포(MT1E 및 MT1X)와 비교하여 스페로이드에서 과발현되는 2개의 동형을 확인했습니다(그림 4C). 또한 스페로이드로 성장한 두 세포주의 유전자 온톨로지(GO) 농축을 보여줍니다. 트리카르복실산 회로(TCA 회로), 전자 전달 사슬(세포 호흡) 및 피루브산 대사로 구성된 탄수화물 대사 과정은 자주 사용되는 용어이며 HepG2/C3A 및 THLE-3 스페로이드가 풍부합니다(그림 4D,E). 세포 해독, 지방산 및 콜레스테롤 대사는 두 스페로이드에 풍부하게 함유된 다른 기능입니다. 이러한 기능은 간 기능에 매우 중요한 것으로 알려져 있습니다.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65086/65086fig01.jpg"> 그림 1: 스페로이드 배양 및 시료 전처리를 위한 워크플로우 . (A) 3D 세포 배양 실험 접근법. 원하는 밀도에서 편평한 세포 배양을 트립신화하고 세포가 스페로이드로 자체 조립되는 마이크로웰을 포함하는 초저 부착 24웰 플레이트에 파종했습니다. 24시간 후, 스페로이드를 생물반응기로 옮기고 분석이 준비될 때까지 배양하였다. (B) 수집 후, 스페로이드를 펠릿화하고 펠릿과 배양 상층액을 모두 처리할 때까지 저장하였다. 히스톤16및 비히스톤 단백질을 추출하고, 펩타이드로 절단하고, 고분해능 질량분석법으로 분석하였다. 질량 분석법에서 얻은 원시 파일을 인간 데이터베이스와 비교하여 검색하고 데이터를 추가로 처리했습니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65086/65086fig01large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65086/65086fig02v2.jpg"> 그림 2: 3D 세포 배양 시스템 . (A) 생물 반응기 부품. 바이오리액터는 물 비드가 들어 있는 가스 교환 및 가습 챔버와 배지 교환 및 스페로이드 수집을 위한 두 개의 플러그가 있는 개방 가능한 셀 챔버로 구성됩니다. (B) 생물반응기 매체 교환. 바이오리액터는 바늘이 있는 주사기를 사용하여 10mL의 성장 배지로 채워집니다. (C) 시스템 제어 앱. 회전 속도, CO2 수준, 온도, 알람 로그 및 기타 기능은 제어 장치를 사용하여 제어할 수 있습니다. (D) 바이오리액터를 3D 인큐베이터에 배치하는 단계. 각 생물반응기에는 생물반응기를 천천히 회전시킬 수 있는 관련 모터가 있습니다. (E) (C) 정제에 의해 제어되는 속도(rpm)로 움직이는 생물반응기. 속도(rpm)는 스페로이드의 크기에 따라 조정됩니다. (F) 내부 생물반응기 de 3D 인큐베이터. 3D 인큐베이터는 최대 6개의 개별 제어 바이오리액터를 장착할 수 있습니다. 사진 제공: Jason Torres Photography. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65086/65086fig02largev2.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65086/65086fig03.jpg"> 그림 3: 이미지 캡처를 통한 스페로이드의 표현형 특성 분석 . (A) 반자동 스페로이드 수. 생물반응기에서 스페로이드의 스냅샷을 촬영한 후 FIJI에서 분석할 수 있도록 이미지를 준비합니다. 각 스페로이드가 계산되고 각각에 대한 ID 번호가 제공됩니다. 매크로가 사용되며, 계산된 스페로이드의 ID, 레이블(분석된 그림의 이름) 및 영역(스페로이드에서 계산된 픽셀 수)을 보여주는 결과가 표시됩니다. (B) 스페로이드 면적의 평면 측정. 매크로를 사용하여 특정 회전 타원체의 면적, 둘레 및 직경을 결정합니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65086/65086fig03large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65086/65086fig04.jpg"> 그림 4: 간 스페로이드의 단백질체 분석. (A) 스페로이드의 생존율은 배양 상층액에 대한 아데닐레이트 키나아제(AK)의 방출을 기반으로 계산되었습니다. 결과는 중복 데이터 포인트의 수단± SD입니다. (B) THLE-3 및 HepG2/C3A 편평 세포 및 스페로이드의 단백질체를 비교하기 위해 주성분 분석(PCA)을 수행했습니다. (C) 인간의 간에서 발현되는 단백질인 메탈로티오닌의 상대적 풍부함. 데이터는 SEM± 수단으로 표시됩니다. (D) 기능적으로 그룹화된 네트워크는 HepG2/C3A 스페로이드 및 (E) THLE-3 스페로이드에 대한 GO 농축을 보여주며, 여기서 그룹당 가장 중요한 용어의 레이블만 표시됩니다. 네트워크는 ClueGo19를 사용하여 구성되었습니다. 노드 크기는 보강 유의성이라는 용어를 나타냅니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65086/65086fig04large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
보충 파일 1: 스페로이드 계수를 위한 매크로 스크립트. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65086/Supplementary%20File%201.docx" target="_blank">이 파일을 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.</a>
보충 파일 2: 스페로이드 평면도 측정을 위한 매크로. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65086/Supplementary%20File%202.docx" target="_blank">이 파일을 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.</a>

재현성이 높은 스페로이드를 성장시키고 이미지 캡처 및 단백질체학을 사용하여 표현형 특성을 분석하기 위한 프로토콜을 제시합니다.

기능적 3D 스페로이드 세포 배양의 반자동 표현형 분석

We present a protocol that describes the properties and advantages of using a standalone clinostat incubator for growing, treating, and monitoring 3D cell ...

이 프로토콜은 재현성이 높은 스페로이드를 성장시키는 방법을 보여주고 3D 구조의 생물학적 기능을 특성화하기 위해 단백질체 실험을 수행하는 방법을 보여줍니다. 당사의 3D 배양은 동일한 바이오리액터에서 수백 개의 생물학적 복제물을 동시에 생성할 수 있으며, LC-MS 접근법은 단일 실험에서 수천 개의 단백질을 측정할 수 있습니다. 이 절차를 시연하는 것은 실험실의 박사 후 연구원인 Stephanie Stransky입니다.시작하려면 HepG2/C3A 및 THLE-3 세포의 현탁액을 복용하십시오. 세포 수를 계산하고 세포 현탁액을 완전 성장 배지에 희석하여 최대 부피 1.5mL에서 100만 개의 세포를 얻습니다. 성장 매체의 0.5 밀리리터를 가진 매우 낮은 부착, 24 우물 둥근 바닥 판의 우물 및 3에 5 분, 000g에 분리기를 세척하십시오.셀 현탁액을 플레이트로 옮기고 120g에서 3분 동안 원심분리합니다. 그런 다음 플레이트를 배양하여 스페로이드 형성을 시작합니다. 다음으로, 긴 바늘이 달린 10밀리리터 주사기를 사용하여 습도 챔버에 25밀리리터의 멸균수를 채우고 세포 챔버에 9밀리리터의 성장 배지를 채워 스페로이드를 옮기기 24시간 전에 바이오리액터를 평형화합니다.그런 다음 바이오리액터를 섭씨 37도에서 24시간 동안 5% 이산화탄소로 둡니다. 1밀리리터 너비의 보어 팁을 사용하여 스페로이드를 위아래로 부드럽게 피펫팅하여 초저 부착판에서 분리하고 조직 배양 접시로 옮깁니다. 남아 있는 스페로이드를 포획하려면 0.5mL의 예열된 성장 배지로 플레이트를 세척하고 배양 접시로 옮깁니다.광학 현미경을 사용하여 스페로이드의 크기, 조밀함 및 진원도를 평가하여 적절하게 형성된 스페로이드를 선택합니다. 선택한 스페로이드를 5mL의 신선한 성장 배지로 채워진 평형 바이오리액터로 옮깁니다. 그런 다음 전체 생물 반응기를 새로운 성장 배지로 채웁니다.바이오리액터를 3D 인큐베이터에 배치하고 제어 장치를 사용하여 회전 속도를 조정합니다. 2-3일마다 10ml의 오래된 성장 배지를 10ml의 새 배지로 교체하십시오. 미디어를 교체한 후 매번 회전 속도를 변경하십시오.15일 동안 스페로이드를 배양하고 두 개의 신선한 생물반응기로 나눕니다. 태블릿에 설치된 3D 앱을 열고 생물 반응기를 선택하고 이미지를 캡처합니다. 대안으로, 생물반응기 뒤에 검은색 배경을 배치하고 세포 챔버에 빛이 반사되지 않도록 합니다.가능한 한 바이오리액터에 가까운 이미지를 캡처합니다. 그런 다음 상단 포트를 통해 긴 바늘에 부착된 주사기를 사용하여 바이오리액터에서 5밀리리터의 배지를 제거하여 스페로이드를 수집합니다. 스페로이드가 생물반응기의 하단 중앙으로 내려가는지 확인합니다.이제 전면 포트를 열고 1밀리리터 너비의 보어 팁을 사용하여 스페로이드를 수집합니다. 이 스페로이드를 마이크로 원심분리기 튜브에 옮기고 500g에서 5분 동안 원심분리한 다음 배지를 폐기합니다. FBS를 제거하기 위해 200마이크로리터의 HBSS를 추가하여 스페로이드를 세척합니다.그런 다음 500g에서 5분 동안 원심분리를 수행하고 상층액을 버립니다. 그런 다음 스페로이드 펠릿을 액체 질소에 빠르게 담그어 얼리고 이 얼린 펠릿을 추가 처리할 때까지 섭씨 영하 80도에서 보관합니다. 세포를 용해하려면 수집된 스페로이드 튜브를 25마이크로리터의 5%SDS에 재현탁시킵니다.위아래로 피펫팅하여 펠릿을 균질화합니다. 다음으로, 1 마이크로 그램의 샘플과 10 마이크로 리터의 0.1 % 트리클로로 아세트산을 녹입니다. 단백질을 추출하고 샘플을 세척한 후 식별된 펩타이드 신호에서 MS/MS 스펙트럼을 생성하도록 MS 수집 방법을 설정합니다.그런 다음 플레이트를 나노리터 액체 크로마토그래피 오토샘플러로 옮깁니다. Orbitrap에서 전체 MS 스캔을 300:1, 100 질량 대 전하 비율로 설정합니다. 해상도를 120000으로 조정하고 자동 게인 제어 목표를 125로 설정합니다.그런 다음 Orbitrap에서 MS/MS를 50 질량 대 전하 비율의 순차 분리 윈도우로 설정합니다. 자동 게인 제어 목표를 400으로 조준하고 더 높은 에너지 충돌 해리 에너지를 30으로 설정합니다. 스페로이드의 생존력 분석에 따르면 아데닐레이트 키나아제의 수준은 17일까지 증가하여 약 7%의 세포 사멸을 초래합니다.그 후 사망률은 5% 미만으로 감소하며, 첫 번째 주성분을 분석한 결과 스페로이드 샘플과 편평 세포 배양 간의 명확한 차이가 밝혀졌습니다. 단백질체 분석 결과 THLE-3 및 HepG2/C3A 스페로이드는 간 기능을 반영하는 유사한 프로필을 가지고 있는 것으로 나타났습니다. 또한, 스페로이드는 편평한 세포에 비해 두 가지 동형의 메탈로티오닌이 과발현되는 것을 보여주었습니다.기능적으로 그룹화된 네트워크는 HepG2/C3A 및 THLE-3 구체에서 탄수화물 대사 과정에 대한 유전자 온톨로지 농축을 보여주었습니다. 성장 배지가 쏟아지는 것을 방지하려면 셀 챔버가 액체로 완전히 채워졌을 때 전면 포트를 열거나 닫지 마십시오. 이 프로토콜에 설명된 샘플 준비 및 분석은 조직 샘플뿐만 아니라 2D 및 3D 방법을 사용하여 세포 배양의 단백질체를 탐색하는 데 사용할 수 있습니다.

semi-automated-phenotypic-analysis-functional-3d-spheroid-cell

Research

JoVE Journal

Biochemistry

스페로이드는 2D 세포 배양 단층 모델에 비해 세포의 환경을 보다 정확하게 표현하는 데 사용되는 3D 세포 배양 모델의 한 유형입니다. 예시 프로토콜에서는 과학자들이 결장직장암 세포주에서 스페로이드를 생성하고 라이브 셀 이미징을 적용하여 스페로이드의 성장을 추적하는 것을 볼 수 있습니다.

세포주에서 스페로이드 생성: 3차원(3D) 세포 배양 방법

전임상 시험에서 인간 대상 시험으로 전환되는 새로운 약물 표적을 식별하는 것은 과학적인 우선 순위입니다. 이를 위해 여기에서는 유전자 고갈이 암 세포주 스페로이드에 미치는 영향을 조사하기 위한 기능적 유전체학 접근 방식을 설명하며, 이는 생체 내에서 인간 암을 보다 적절하게 모델링합니다.

기능 유전체학에게 검사를 활용하여 암 세포 회전 타원체 문화에 잠재적으로 소설 약 표적을 식별하는

여기에서는 세포 응집을 통해 3D 세포 스페로이드를 형성하기 위한 빠르고 유연한 프로토콜에 대해 설명합니다. 이는 여러 세포 유형에 쉽게 적용할 수 있으며 세포 이동, 침습 또는 아노이키스 분석을 포함한 다양한 응용 분야와 세포-매트릭스 상호 작용의 이미징 및 정량화에 적합합니다.

3D 회전 타원체 생산을위한 효율적이고 유연한 셀 집계 방법

여기, 췌장암 세포 및 섬유 아 세포, 세포 외 유출 분석기를 사용 하 여 대사 기능을 측정 하 여 다음의 3 차원 (3D) 회전 타원 체 공동 문화의 준비에 대 한 메서드를 설명 합니다.

준비 및 췌장암 세포 및 섬유 아 세포의 3 차원 회전 타원 체 공동 문화의 변화 분석 결과

이 프로토콜은 약물 을 평가하기 위해 증식, 세포 독성 테스트, 유세포 분석, 면역 형광 염색 및 공초점 이미징의 정량화를 포함한 환자 유래 스페로이드 생성 및 하류 분석을 설명합니다. 반대로 신생물 치료제로 후보자의 잠재력. 이 프로토콜은 각 환자 및 질병 단계에 대한 특정 약물을 식별하여 정밀 의학을 지원합니다.

암 줄기 세포를 표적으로 하는 반대로 신 생물 성 약 검열을 위한 생리학 환자 파생된 3D Spheroids

우리는 세포 스페로이드를 재배 할 수있는 모터 구동 원심 미세 유체 장치를 제시합니다. 이 장치를 사용하여, 단일 또는 다중 세포 모형의 스페로이드는 높은 중력 조건 하에서 쉽게 cocultured 될 수 있었습니다.

다세포 3차원 스페로이드 생성을 위한 랩 온 어 CD 플랫폼

제시된 접근은 3D 스페로이드 ascy 및 T 세포 세포 독성에 있는 암 세포 침략을 동시에 평가합니다. 스페로이드는 비계가 없는 아가로즈 멀티 마이크로웰 캐스트에서 생성됩니다. I형 콜라겐 매트릭스에 공동 배양 및 포함은 암세포 침입 및 T세포 중재 세포 독성을 모니터링할 수 있는 동일한 장치 내에서 수행된다.

3D 배양에서 암 세포 침략 및 T 세포 세포 독성 을 감시

이 프로토콜은 사용자가 Seahorse 세포외 플럭스 분석을 사용하여 3D 암 세포주 유래 구상체에서 미토콘드리아 에너지 대사를 조사하는 데 도움이됩니다.

세포외 플럭스 분석을 이용한 단일 3D 미세조직 구상체의 미토콘드리아 에너지 대사 탐구

이 프로토콜은 대규모 고함량 스크리닝 및 분석에 적합한 방식으로 세 가지 유형의 구상체를 생산하는 방법을 자세히 설명합니다. 또한, 이들이 스페로이드 및 개별 세포 수준에서 어떻게 분석될 수 있는지를 보여주는 예들이 제시된다.

고함량 스크리닝 및 분석 응용을 위한 구상체의 대규모 생산을 위한 강력한 방법

여기에서는 후속 다중 파라미터 라이브 셀 현미경을 수행하기 위한 다양한 다세포 스페로이드 형성 방법을 설명합니다. 형광 평생 이미징 현미경(FLIM), 세포 자가형광, 염색 염료 및 나노 입자를 사용하여 살아있는 3차원(3D) 암 및 줄기 세포 유래 스페로이드에서 세포 대사, 저산소증 및 세포 사멸을 분석하는 접근 방식을 시연합니다.

다세포 스페로이드의 생산 및 다중 파라미터 Live Cell Fluorescence Lifetime Imaging Microscopy (FLIM)

여기에서 우리는 세포외 플럭스 분석을 통해 3차원(3D) 신경아교종 스페로이드와 이미징 기반 정규화를 통합하는 대사 프로파일링 플랫폼을 구축합니다. 이 접근법을 통해 약물 치료에 대한 종양 대사 반응을 보다 정확하게 평가할 수 있으며 잠재적인 내성 메커니즘에 대한 통찰력을 얻을 수 있습니다.

약물 스크리닝을 위한 3차원 뇌종양 스페로이드의 대사 프로파일링의 발전

배우세요 3D 스페로이드 세포 배양의 반자동 표현형 분석 방법을 LC-MS 단백질체학 기술을 활용하여 HepG2/C3A와 THLE-3 세포의 생물학적 기능을 특성화합니다. 이 프로토콜은 생물의학 연구에 활용됩니다.

기능적 3D 스페로이드 세포 배양의 반자동 표현형 분석

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